FL6000'ninÇift modülerli klorofil floresan ölçer

FL6000'ninÇift modüler klorofil fluoresantı, mavi-yeşil yosun veya yeşil yosun gibi mikroyosun, klorofil veya kist süspansiyonları için fotosentez mekanizmalarının derinlemesine araştırılması için tasarlanmış FL3500 çift modüler klorofil fluoresantının en son yükseltilmiş sürümüdür. Cihaz, ölçüm örneğinin sıcaklığını kontrol edebilecek çift kanallı ölçüm kontrolüne sahiptir ve tek dönüş ışığı (STF) ile donatılmıştır, kullanıcının kendi kendini değiştirebileceği çeşitli ölçüm prosedürlerine dahil ve şu anda uluslararası klorofil floresansının çeşitli derinlemesine mekanizmaları üzerinde araştırmalar yapabilir. Temel yapısı, bir süspansiyon standart örnek bardağı, 3 adet LED ışık kaynağı ve 1 MHz/16 bit AD dönüştürülen PIN diyot sinyal detektörünü içeren optik ölçüm kafasıdır. AD dönüşüm kazanç ve kredi süresi yazılım tarafından kontrol edilebilir. Detektörler klorofil floresan sinyallerini 4 µs'ye kadar zaman çözünürlüğünde ölçebilir (hızlı versiyonda 1 µs).

Uygulama Alanı:

·Bitki fotosentezi özellikleri ve metabolik bozukluklar taraması

·Biyolojik ve biyolojik olmayan zorlamaların tespiti

·Bitkilerin baskı direnci veya duyarlılık çalışmaları

·Metabolik Kaos Araştırması

·Fotosentez Sistemi Çalışma Mekanizmi Araştırması

·Zorlu bitki fotofizyolojik yanıt stratejisi araştırması

Tipik örnekler:

·Mavi Yosun (Mavi Bakteri)

·Yeşil Yosun

·Kloroyeşil Süspansiyon

·Kistik Süspansiyon

·Bitki parçaları

Özellikleri:

·Dahili klorofil fluoresans indüksiyon ölçüm, PAM (darbe modülasyonu) ölçümü, OJIP hızlı fluoresans dinamiği ölçümü, QA - reoksidasyon dinamiği, S durumu dönüşümü, klorofil fluoresans söndürme ve diğer ölçüm prosedürleri, dünyanın en kapsamlı fonksiyonu olan klorofil fluoresans cihazıdır.

·Çift modülasyon teknolojisi, iki renkli modülasyonlu ışık ölçümü, modülasyonlu fotokimyasal ışık ve sürekli fotokimyasal ışık, STF (tek döngülü flaş), TTF (çift döngülü flaş) ve MTF (çok döngülü flaş) ve özelleştirilmiş FRR (Hızlı Tekrarlama Hızı) ölçümleri

·Standart Sürüm 4 µs Zaman Çözünürlüğü, Hızlı Sürüm1 µs'ye kadar, şu anda en yüksek zaman çözünürlüğü olan klorofil fluoresantıdır

·Kontrol ünitesi çift kanaldır, sıcaklık kontrolü için sıcaklık sensörü bağlanabilir, Hill reaksiyonu ölçümü için oksijen ölçüm ünitesi bağlanabilir vb.

·Son derece yüksek hassasiyete sahiptir, en düşük tespit limiti 100ng Chla / L

·Işığın ölçümü, optik ışık, doymuş tek ters ışık kaynağı renk, yoğunluk özelleştirilebilir

·Konsol renkli dokunmatik ekran ile gerçek zamanlı fluoresans grafiklerini görüntüler

Teknik parametreler:

·Deneysel prosedür: Kautsky klorofil indüksiyon etkisi ölçümü; PAM (Darbe Modülasyonu)Floresans söndürme dinamiğiölçüm; OJIP Hızlı Floresans Dinamik Ölçümleri; QA - Reoksidasyon Dinamikası; S durumu dönüşümü; Hızlı klorofil fluoresans induksiyonu

• Floresans parametreleri:

üPAMFloresans söndürme dinamiği ölçümü: Floresans söndürme dinamiği eğrisini ölçür, F hesaplanabilir₀Fm, Fv, F.₀', Fm ', Fv ', QY (II), NPQ, ΦPSII, Fv / Fm, Fv ' / Fm ', Rfd, qN, qP,ETR'nin50'den fazla klorofil floresans parametresi;

üOJIP'inHızlı Floresans Dinamik Ölçümleri: OJIP Hızlı Floresans Dinamik Eğrisi ile F hesaplanabilir₀FJ, Fi, Fm, Fv, VJ, Vi, Fm / F₀FV / F₀Fv / Fm, M0, Alan, Sabit Alan, SM, SS, N, Phi_P₀ve psi_₀ve Phi_E₀ve Phi_D₀Phi_Pav, ABS / RC, TR₀/ RCve et₀/ RCve di₀/ RC20'den fazla ilgili parametre;

üQAQA-reoksidasyon kinetikleri: QA-reoksidasyon esnasında Hızlı Faza, Orta Faza ve Yavaş Faza (A1, A2, A3) ve Zaman Sabitleri (T1, T2, T3) için kullanılan QA-reoksidasyon kinetikleri eğrisini ölçer.

üS'ninDurum dönüşümü (S-state test): Aktiv olmayan ışık sistemi II (PSII) hesaplamalarına uygun S-state test floresan bozulma eğrisini ölçer_XReaksiyon Merkezi Sayısı

üFlash Fluoresans İndüksiyonu (FFL, yalnızca hızlı sürüm): Etkili antenin alanı, antenin bağlantısı vb. için uygun hesaplamak için

üPSII Anten Heterojenliği PSII için kullanıcı özel protokol özellikleri sağlarαPSII ileβAnaliz, PSII Etkili Anten Kesim Alanı (sPSII'ninParametrelerin ölçümü (özelleştirme özelliği)

üQA– Reoksidasyon Dinamik Eğrisi veS-durum testiFloresans Değişme Eğrisi (Li'nin，2010）

·Zaman Çözünürlüğü (örnekleme frekansı): Yüksek hassasiyetli detektör, Standart Sürüm Zaman Çözünürlüğü 4 µs, Hızlı Sürüm 1 µs

·Minimum tespit sınırı: Standart sürüm 100ng Chla / L, Hızlı sürüm 1μg Chla / L

·Kontrol ünitesi: Floresans eğri grafiklerini gerçek zamanlı olarak görüntülemek için renkli dokunmatik ekran

·Ölçüm Odası:

oFlaş ölçümü: 623nm kırmızı turuncu ışık ve 460nm mavi ışık, flaş süresi 2-5µs

oTek döngülü doymuş parıldırma: Maksimum ışık gücü 170000 µmol (fotonlar) / m².s, parıldırma süresi 20-50 µs

oSürekli fotokimyasal ışık: maksimum ışık gücü 3500 µmol (fotonlar) / m².s

yaFloresans detektörü: PIN fotodiyotları

oM.Ö.Dönüştürücü: 16bit

oÖrnek test tüpü: alt alanı 10 x 10mm, hacmi 4ml

• Özel ölçüm odası (isteğe bağlı): Işık, doymuş parıltı ve fotokimyasal ışık renkleri (mavi, mavi, amber vb.) ve tespit bantları (ChlA, ChlB) özelleştirilebilir

• Uzak kızılötesi ışık kaynağı (isteğe bağlı): F ölçümü için₀dalga uzunluğu 730nm

·Oksijen ölçüm modülü (isteğe bağlı): Yosun oksijen salınımını ölçer

·Sıcaklık kontrolü (isteğe bağlı): TR 6000 sıcaklık düzenleyicisi, 5-60 ° C sıcaklık aralığı, 0.1 ° C hassasiyeti

• Elektromanyetik karıştırma (isteğe bağlı): örnekleri karıştırmak için, örneklerin çökmesini önlemek için, el ile hız ayarlanabilir veya yazılım otomatik olarak kontrol edilebilir

• İletişim Arayüzü: RS232 Seri Portu / USB

FluorWin'inYazılım: Deney planlarını tanımlamak veya oluşturmak, ışık kaynağı kontrol ayarları, veri çıktı, analiz ve grafik görüntülemesi

Tipik uygulamalar:

1. Çin Bilimleri Akademisi Akvibiyoloji Enstitüsü Wang Qiang araştırmacıları, FL3500 klorofil floresans (FL6000'den önceki model) ve TL bitki termal salınım sistemini kullanarak, nitrit zorlamasının ilk olarak Synechocystis sp. PCC 6803 PSII reseptör tarafını etkilediğini kanıtladı (Zhan X, et al, 2017). Bu tür derinlemesine fotosentez mekanizmalarının araştırılması genellikle bu iki aletin tamamlanması için gereklidir.

2.Çin Bilimleri Akademisi'nin Xinjiang Ekoloji ve Coğrafi Enstitüsü'nün araştırmacısı Pan Ruangyuan ve konu grubu, FL3500 klorofil fluoresansını (FL6000'den önceki model) kullanarak çevredeki ağır metaller, tuzlar, zehirli bileşikler, otöldürücüler, böcek ilaçları ve antibiyotikler gibi çeşitli zararlı maddelerin yosun toksikolojik araştırmalarını derinlemesine yürüttü. FL3500'in benzersiz yüksek çözünürlüklü OJIP hızlı fluoresans dinamiği ölçümü, QA-re-oksidasyon dinamiği ve S durumu dönüşümü gibi klorofil fluoresans ölçüm prosedürleri ile, farklı konsantrasyonların ve işleme sürelerinin alg fotosentezi sistemlerine zarar vermesinin toksik mekanizmalarını ve ekolojik etkilerini kapsamlı bir şekilde ortaya koymaktadır. Şu anda, Pan Yong Konu Grubu, uluslararası SCI dergilerinde ve yerli çekirdek dergilerde 20'den fazla yüksek düzeyde makale yayınlamak için FL3500 (FL6000'den önce model) kullandı.

Menşeni: Çek Cumhuriyeti

Referanslar:

1. Manaa A ve diğerleri. 2019. Kinoa'nın tuzluluk toleransı (Chenopodium quinoa'sıWilld) kloroplast ultrayapısı ve fotosentetik performans tarafından değerlendirildiği gibi. Çevre ve Deneysel Botaniği 162: 103-114

2. Yu Z ve diğerleri. 2019. Chlamydomonas reinhardtii'nin kadmiyum stresine duyarlılığı fototaksilerle ilişkilidir. Çevre Bilimi: Süreçler ve Etkiler 21: 1011-1020

3. Liang Y ve diğerleri. 2019. Deniz diatomlarında sıcaklık aklimasyonu ve adaptasyonunun moleküler mekanizmaları. ISME dergisi, DOI: 10.1038/s41396-019-0441-9

4. Orfanidis S, ve diğerleri. 2019. Biyoteknoloji Aracılığıyla Noisance Cyanobacteria Eutrophication Çözümü. Uygulamalı Bilimler 9(12): 2566

5. Sicora C I ve diğerleri. 2019. PSII fonksiyonunun düzenlenmesiCyanothece'ninsp. ATCC 51142 ışık-karanlık döngü sırasında. Fotosentez Araştırması 139(1-3): 461-473

6. Smythers A L, ve diğerleri. 2019. Poast'ın etkisini tanımlamakChlorella vulgaris yakınlarındaki restoranlarHedef olmayan bir organizma. Kimosfer 219: 704-712

7. Albanese P, ve diğerleri. 2018. Farklı irradianslarda yetiştirilen bezelye bitkilerinde tilakoid proteom modülasyonu: bir olmayanTranskriptomik veri entegrasyonu ile desteklenen model organizma. Bitki Dergisi 96(4): 786-800

8. Antal T, Konyukhov I, Volgusheva A ve diğerleri. 2018. Fotobiyoreaktörlerde fotosentetik kapasitenin sürekli izlenmesi için klorofil floresans indüksiyon ve rahatlama sistemi. Fizyol Plantarum. DOI: 10.1111/ppl.12693

9. Antal T K, Maslakov A, Yakovleva O V, et al. 2018.Kural tabanlı kinetik Monte-Carlo yöntemi kullanarak klorofil floresans artması ve çürüme kinetiklerinin ve P700 ile ilgili emici değişikliklerin simülasyonu. Fotosentez Araştırması. DOI: 10.1007 / s11120-018-0564-2

10.Biswas S, Eaton-Rye JJ ve diğerleri. 2018. PsbY, PsbM eksik bir mutantta fotosistem II'ye fotohasarın önlenmesi için gereklidir.Sinekosistissp. PCC 6803. Fotosentetik, 56(1), 200–209.

11.Bonisteel E M, ve diğerleri. 2018. Pikosyanobakterilerdeki Fotosistem II onarım hızlarındaki suş özel farklılıklar, FtsH protein seviyelerindeki farklılıklarla ve izoform ekspresyon desenlerinde ilişkilidir. PLoS ONE 13(12): e0209115.

12.Fang X ve diğerleri. 2018. Deniz siyanobakteriyasının transkriptomik yanıtlarıProchlorococcus'unViral liz ürünleri. Çevre Mikrobiyolojisi, doi: 10.1101/394122.

13.Kuthanová Trsková E, Belçika E, Yeates A M ve diğerleri. 2018. Anten proton duyarlılığı fotosentetik ışık hasat stratejisini belirler, Deneysel Botanik Dergisi 69(18): 4483-4493